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三方檢測機構實時熒光定量PCR詳解步驟與實驗操作技巧

更新時間:2024-10-31 點擊次數:0 所屬欄目:行業信息

  實時熒光定量PCR(Quantitative Real-time PCR)是一種在DNA擴增反應中,以熒光化學物質測每次聚合酶鏈式反應(PCR)循環后產物總量的方法。通過內參或者外參法對待測樣品中的特定DNA序列進行定量分析的方法。

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  第一步:提取核酸樣品

  首先,從待檢樣品中提取核酸。提取方法根據樣品的性質可以選擇不同的試劑盒,如常用的基于硅膠膜或磁珠法的核酸提取試劑盒。提取的核酸應具有一定的純度和濃度,以保證后續PCR反應的準確性和穩定性。

  第二步:設計引物與探針

  PCR引物和探針的設計至關重要,它們直接影響PCR的特異性和靈敏度。引物應具有特異性,避免引物間或引物與非靶序列的雜交,探針則應設計在引物的中間位置,用于檢測PCR產物并發出熒光信號。在設計引物和探針時,建議使用專業的PCR引物設計軟件,以確保其特異性和穩定性。

  第三步:制備PCR反應體系

  根據實驗需要,合理配置PCR反應體系。通常包括DNA模板、引物、探針、DNA聚合酶、緩沖液、dNTPs等。在配置反應體系時,應盡量避免氣泡產生和樣品交叉污染,保證反應體系的穩定性和準確性。

  第四步:進行實時熒光定量PCR

  將制備好的PCR反應體系加載至實時熒光定量PCR儀器中,設置好反應程序,進行PCR擴增。實時熒光定量PCR儀器可以實時監測PCR產物的累積情況,并生成熒光信號曲線。根據曲線的特征可以確定靶基因的表達量或拷貝數。

  第五步:數據分析與結果解讀

  z后,根據實時熒光定量PCR儀器輸出的數據,進行數據分析和結果解讀。常用的分析方法包括計算Ct值、繪制標準曲線、計算樣品中靶基因的相對表達量等。通過合理的數據分析,可以準確評估實驗結果并得出科學結論。

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